PCR (Polymerase Chain Reaction) Ⅰ

Slides:



Advertisements
Similar presentations
생화학 실험 (2) 5주차 Subcloning Ⅱ : Detection of Subcloning - Rapid Microscale Isolation of Plasmid from Transformed Cells 담당교수 : 하상준 교수님 담당조교 : 조소영.
Advertisements

Mini-prep, Restriction Enzyme 분자생물학실험 SUBJECT. Sequence blast Restriction enzyme Mini-prep E.coli transformation TA Ligation PCR DNA EXTRACTION 분자생물학실험.
5. 중합효소 연쇄반응 (polymerase Chain Reaction). 중합효소 연쇄반응 (polymerase chain reaction, PCR) 특정 DNA 부위를 특이적으로 반복 합성하여 시험관내에서 원하는 DNA 분자를 증폭 1986 년 Kary Mullis.
생화학 13 장. 핵산의 구조와 기능 피리미딘 염기와 퓨린 염기 오탄당 – 리보오스와 디옥시리보오스.
담당 교수님 : 김건수 교수님 담당 조교님 : 김익중 조교님 생명과학과 안혁근 서강대학교 Sogang university DNA microarray 를 이용 한 유전자 differential expression 정량측정 실험.
중합효소연쇄반응 (PCR). Polymerase Chain Reaction (PCR)  중합효소연쇄반응  주형 DNA 분자의 특정 부분을 선택적으로 증폭 Primer set 와 내열성 DNA polymerase 를 이용하여 짧은 시간 내에 미량의 시료에서  Kary.
품종보호제도 강화를 위한 유전자 분석 기술의 활용
RNA isolation from monolayer cell
Chapter.20 DNA sequencing을 이용한 지중해성 빈혈의 원인.
식품의약품안전청 _KJYDGP DNA Methylation by EZ DNA Methylateion-Gold Kit (ZYMO RESEARCH) 1-2. The Sample list 1-1. The Method of Methylation.
PCR mediated mutagenesis 2013 년도 2 학기 생화학 실험 (2) 6 주차 조교 : 전지선.
1 Clinical Biochemistry Lab. College of Health Science, Department of Biomedical Laboratory Science SDS-PAGE gel making Clinical chemistry experiment.
실시간 PCR(real-time PCR)법과
Double & Triple Blocking by DNA Binding Protein
genotyping P M1 M2 F1 F2 N Primer 바꾸기전 : hetero일 경우 175, 280에서 2개의
3조의 qPCR결과로 gel을 내림. 왼쪽부터 Marker, GAPDH, PPAR-r, C/EBP-a, Adiponectin, Them6, Rbpms2, Hist1h2ad 모든 gene PCR product size는 200bp로 우리가 예상했던 대로 나왔음. Hist1h2ad는.
DNA microarray를 이용한 유전자 differential expression 정량측정 실험
Contents 1. 실험 목적 2. 실험 배경 이론 3. 실험 원리 및 방법 4. 실험 결과 및 분석
1) 미생물의 배양법 미생물이란 LB배지 미생물 배양 방법 고체배양 : 사면배양/ 천자배양 …
GENETIC TECHNOLOGY 생물학개론 15주차 강의
Biotechnology and Recombinant DNA
Western blot.
RNA analysis.
핵산의 성질과 분리 생물환경학과 김 정 호.
Molecular Biological Tools in the Environmental Engineering
PCR mediated mutagenesis 생화학 실험 II
∘ 체세포분열과 생식세포분열의 특징을 비교하시오.
분자생물학실험 SUBJECT Electrophoresis 결과 확인, Sequence blast
Technical Tips & Cautions
RT-PCR법을 이용한 결핵 검출법 (SLAN장비의 소개)
분자생물학실험 Total RNA extraction RNA quantitation CDNA synthesis RT-PCR
DNA computing을 위한 염기서열에 대한 바람...
분자생물학실험 Introduction.
분자생물학실험 Introduction.
Mammalian cell culture Ⅲ (Real-time PCR)
Spectrophotometer & Determination of Protein concentration
PCR과 Electrophoresis를 이용한 chromosomal DNA의 복제 및 분석
족흔적의 활용 1. 족적 1)범행경로, 도주경로 등을 추정하는 것이 가능하다 2)범인의 체격 및 직업 등의 추정도 가능하다 3)범인수배자료로 활용할 수 있다 2. 차량흔 차종, 형식, 연식에 따라 접지폭, 모양 등이 각각 상이 하므로 타이어흔으로 범행에 사용된 차량을 추정할.
MICRO-ARRAY 화공생명공학과 이수진.
RT-PCR (Real Time quantitative Reverse Transcription PCR)
유전자 발현 분석 (Analysis of Gene Expression )
Y chromosome and Multiplex PCR
후 공진향 피부 비책 마스크 3종 Beauty. 컨텐츠 개발팀.
분자생물학실험 SUBJECT DNA extraction.
제16장 유전공학-첨단분야.
제15장. 유전체 조작과 연구 유전체 사업 유전공학 분자도구들 생명 윤리.
PCR mediated mutagenesis 생화학 실험 II
2018-2학기 생명과학실험기법 Reverse transcription PCR & Real-Time PCR.
Ⅲ-3. 생명의 연속성 5. 유전적 다양성과 현대의 진화
Negative PCR control I 2% agarose 10% PAA
MRNA Quantification.
P C R 분 석 신 유 근 PCR분석 – PCR (Polymerase Chain Reaction)
Mammalian cell culture Ⅰ
제11장 유전공학 11.1 DNA 변형과 조작을 위한 분자적 도구들
PCR (Polymerase Chain Reaction) Ⅱ
세포생물학 및 실험 학기 생명과학과 박태식 교수님 화요일 (1-4 교시) Real time PCR (Q-PCR)
가천대학교 생명과학과 생물학 및 실험 학기 생물학 및 실험 1 Exp 6. 확산과 삼투.
Restriction enzyme Ⅰ.
돌연변이 생물교재론 양현주.
6장. 정제된 DNA 의 조작 유전공학.
생물분리정제공학 생명체 기본구성분자의 이해.
Version Space의 실험적 고찰 장해만.
Macromolecule analysis Ⅰ
원시 지구에서 단백질과 핵산은 어떻게 만들어졌는가?
노인학대예방 교육 교육강사 시 설 장 송나겸 보성실버센터.
HERVs 의 LTR은 강력한 프로모터로 작용하지만 특정 유전자에서만 작용을 하고 있으며, 또한 특정 조직이나 cell line에서만 작용하고 있다. 무엇이 이러한 HERV들을 조절하는 것일까?
Restriction enzyme Ⅱ.
가천대학교 생명과학과 학기 생명과학실험기법.
Site directed mutagenesis를 이용한 유전자의 기능 분석
DNA로 기록된 생물정보와 정보의 활용 중심원리, 생명공학, 농업혁명.
Presentation transcript:

PCR (Polymerase Chain Reaction) Ⅰ

01 실험 목적 PCR PCR의 이론을 이해하고 실험 통해 과정을 단계별로 숙지하여 본다.

02 Introduction PCR (Polymerase Chain Reaction) 계대배양 02 Introduction PCR (Polymerase Chain Reaction) 중합효소 연쇄 반응(Polymerase Chain Reaction, PCR)은 DNA의 원하는 부분을 복제·증폭시키는 분자생물학적인 기술이다. 이 기술은 사람의 게놈과 같은 매우 복잡하며 양이 지극히 미량인 DNA 용액에서 연구자가 원하는 특정 DNA 단편만을 선택적으로 증폭시킬 수 있다. 

계대배양 02 Introduction PCR 과정 cycling

02 Introduction Step 1 : Denaturation 두 가닥의 DNA를 약 94℃에서 15~30초간 처리 계대배양 02 Introduction Step 1 : Denaturation 두 가닥의 DNA를 약 94℃에서 15~30초간 처리 Double strand DNA → Single strand DNA

02 Introduction Step 2 : Annealing 계대배양 02 Introduction Step 2 : Annealing 약 50~65 ℃ 정도로 온도를 떨어뜨려 분리된 ssDNA에 상보적인 sequence를 갖는 primer가 결합 Primer의 Tm 값에 의해 온도결정 3’ 5’ Forward primer Sense strand Antisense strand Reverse primer

02 Introduction Step 2 : Annealing 계대배양 02 Introduction Step 2 : Annealing Primer 제작 좋은 Primer 조건 20~25mer Primer 간의 상보성 X GC 함량 너무 높지 X 두 primer의 Tm값이 비슷 Temperature of melting (Tm 값) *Tm 값 = {4(G+C)} + {2(A+T)} ℃ 5’-ATGGCGGAGGCTGCAACTCCCGGAAAAATT-3’ 3’-TTTTAA-5’ 5’-ATGGCG-3’ 3’-TACCGCCTCCGACGTTGAGGGCCTTTTTTAA-5’

Tm 온도가 너무 높을 때 -primer가 tamplate에 붙지 않음 Tm 온도가 너무 낮을 때 -non-specific binding ↑ Tm 온도가 맞을 때 -specific binding

02 Introduction Step 3 : Extension 계대배양 02 Introduction Step 3 : Extension Taq DNA polymerase의 최적 활성온도인 약 68~72 ℃ 에서 진행 *호열성 세균인 Thermus aquaticus에서 유래하는 내열성 DNA중합효소 Annealing 단계에서 결합된 primer의 3’-OH에서부터 dNTP를 하나씩 첨가하여 extension 3’ 5’ Forward primer Sense strand Antisense strand Reverse primer Taq

1회cycle에서 합성된DNA는 다음cycle에서는 PCR반응의 기질로 이용 계대배양 02 Introduction Cycle 1회cycle에서 합성된DNA는 다음cycle에서는 PCR반응의 기질로 이용

02 Introduction PCR 종류 ● RT-PCR (Reverse Transcription-PCR) 계대배양 02 Introduction PCR 종류  ● RT-PCR (Reverse Transcription-PCR) - Revers transcriptase (역전사 효소)를 이용하여 RNA 로부터 cDNA를 합성한 후 PCR을 하는 방법 ● qRT-PCR (Quantitative Real Time-PCR) - PCR 과정중 실시간으로 증폭되는 산물의 양을 수치화하여 샘플에 존재하는 기질의 초기량을 정확히 정량화 할 수 있음

02 Introduction Gel electrophoresis -PCR을 통해 증폭된 DNA product를 확인하는 방법 계대배양 02 Introduction Gel electrophoresis -PCR을 통해 증폭된 DNA product를 확인하는 방법 

계대배양 03 Materials & Methods 다음 표를 참고하여 PCR solution을 만든다. Tapping으로 섞어준 후 spin-down. PCR machine에 온도 시간 설정 후 작동시킨다. PCR product 만들기 : DDW, PCR master Mix, DNA template, Primer, Pipette, Tip, PCR machine Master Mix 15µl DNA template 2µl Primer (Forward) 1µl Primer (Reverse) DDW 11µl total 30µl

계대배양 03 Materials & Methods Agarose powder 0.4g와 TAE buffer 20ml을 비커에 넣고 살짝 흔들어준다. 2. 비커에 랩을 씌우고 구멍을 살짝 뚫은 채 전자레인지에서 1분간 돌려준다. 3. powder가 완전히 녹으면 gel stain 1µl를 넣고 잘 흔들어 준다. 4. Gel tray에 완전히 녹은 gel 용액을 붓고 comb을 끼워준다. Agarose powder, TAE buffer, 전자레인지, 랩, 저울, 기름종이, 시약 숟가락, 비커, gel tray, comb, gel stain, Pipette, Tip

계대배양 04 Result

계대배양 05 Discussion 4주차 + 5주차 report ->4월 6일 수업 시작 전에 제출